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購買進(jìn)口儀器、試劑和耗材——就在始于2001年的畢特博生物 effectnews.cn |
在20世紀(jì)80年代后期,科家學(xué)們開始嘗試用嵌合抗原受體(Chimeric Antigen Receptor, CAR)T細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn),當(dāng)時三名研究人員通過基因工程改造T細(xì)胞使其表達(dá)識別半抗原的抗體并重定向其特異性1-2。 2011年,Carl June和他的團(tuán)隊(duì)報道了一例使用自體抗CD19 CAR-T細(xì)胞(CAR-T19)成功治愈的一名慢性淋巴細(xì)胞白血病(CLL)病患3。2017年,首款CAR-T療法—諾華制藥“Kymriah”的獲批,堪稱為“免疫療法的里程碑”,成功宣告CAR-T技術(shù)在商業(yè)化臨床的使用。迄今為止,已有眾多CAR-T細(xì)胞的相關(guān)文獻(xiàn)發(fā)表,描述從CAR-T細(xì)胞的設(shè)計、開發(fā)到臨床應(yīng)用。在這一期的微信中,我們回顧了最近在CAR-T細(xì)胞研究領(lǐng)域里的一系列重要進(jìn)展,并探討了從實(shí)驗(yàn)室到臨床采用T細(xì)胞療法的深遠(yuǎn)意義。 設(shè)計更好的T細(xì)胞 細(xì)胞治療的第一步,是需要從患者身上分離T細(xì)胞,并進(jìn)行激活、擴(kuò)增和遺傳修飾,以表達(dá)體外識別所選抗原的CAR。在這個階段,有許多因素需要加以考慮,其中包括靶點(diǎn)選擇和遺傳修飾的方法。
1. 靶點(diǎn)選擇 CARs是合成的跨膜受體,其含有賦予抗原特異性抗體的胞外scFv結(jié)構(gòu)域,和一種細(xì)胞內(nèi)組分,這種細(xì)胞內(nèi)組分通常包括CD3ζ和協(xié)同刺激(比如CD28、4-1BB、OX-40)信號域,以模擬T細(xì)胞信號(圖1)4-5。在抗原識別后,CAR-T細(xì)胞被激活并啟動它們的效應(yīng)子功能,比如細(xì)胞因子的產(chǎn)生和細(xì)胞毒性,其最終導(dǎo)致任何表達(dá)靶點(diǎn)抗原細(xì)胞的消除。由于腫瘤抗原通常也在非惡性細(xì)胞上表達(dá),因此,靶點(diǎn)選擇在CAR-T細(xì)胞設(shè)計中是一項(xiàng)挑戰(zhàn)。
圖1. 嵌合抗原受體(CAR)的結(jié)構(gòu) 摘選自CAR-T細(xì)胞制備的掛圖,通過Nature Protocols制作并由STEMCELL Technologies提供支持。以下研究表明可以通過特異性靶點(diǎn)的選擇,來減少CAR-T細(xì)胞療法副作用:
2、遺傳修飾 通過對T細(xì)胞遺傳修飾表達(dá)CAR,其被重新定向至一特定的靶點(diǎn)。目前,最常用的遺傳修飾T細(xì)胞的方法是使用病毒(比如γ-逆轉(zhuǎn)錄病毒或慢病毒)的載體,這些工程化載體可以攜帶CAR構(gòu)建體9。簡言之,T細(xì)胞被激活,然后用可將其攜帶的物質(zhì)釋放進(jìn)細(xì)胞的病毒顆粒進(jìn)行轉(zhuǎn)導(dǎo),從而導(dǎo)致CAR構(gòu)建體插入轉(zhuǎn)導(dǎo)的T細(xì)胞基因組里(圖2)。最近,Li等人發(fā)表了關(guān)于使用EasySepTM分離的T細(xì)胞的γ-逆轉(zhuǎn)錄病毒的產(chǎn)生和T細(xì)胞轉(zhuǎn)導(dǎo)的完整方案10。
圖2. 通過逆轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)導(dǎo)T細(xì)胞 摘選自CAR-T細(xì)胞制備的掛圖,通過Nature Protocol制作,并由STEMCELL Technologies提供支持。以下研究闡述了通過對T細(xì)胞進(jìn)行遺傳修飾來定向特定的靶點(diǎn):
3、新概念 實(shí)驗(yàn)室里的前沿研究在CAR-T細(xì)胞設(shè)計中不斷提出了各種新的、令人興奮的概念。以下研究介紹了一些關(guān)于T細(xì)胞傳送的新概念:
想了解CAR-T細(xì)胞的最新研究進(jìn)展包括以上文獻(xiàn)的具體內(nèi)容,請點(diǎn)擊這里。
參考文獻(xiàn) 1. Gill S et al. (2016) Chimeric antigen receptor T cell therapy: 25 years in the making. Blood Rev 30 (3): 157-67. 2. Gross G et al. (1989) Expression of immunoglobulin-T-cell receptor chimeric molecules as functional receptors with antibody-type specificity. Proc Natl Acad Sci U S A 86 (24): 10024-8. 3. Porter DL et al. (2011) Chimeric antigen receptor-modified T cells in chronic lymphoid leukemia. N Engl J Med 365: 725-33. 4. Srivastava S et al. (2015) Engineering CAR-T cells: design concepts. Trends Immunol 36(8):494-502. 5. Fesnak AD et al. (2016) Engineered T cells: the promise and challenges of cancer immunotherapy. Nat Rev Cancer 16: 566-81. 6. Liu H et al. (2017) Targeting alpha-fetoprotein(AFP)-MHC complex with CAR T-cell therapy for liver cancer. Clin Cancer Res 23(2): 478-88. 7. Roybal KT et al. (2016). Precision tumor recognition by T cells with combinatorial antigen-sensing circuits. Cell 164(4): 770-9. 8. Spitzer MH et al. (2017). Systemic immunity is required for effective cancer immunotherapy. Cell 168(3): 487-502. 9. Dai H et al. (2016) Chimeric antigen receptors modified T-cells for cancer therapy. J Natl Cancer Inst 108(7). 10. Li G et al. (2017) Gammaretroviral production and T cell transduction to genetically retarget primary T cells against cancer. Methods Mol Biol 1514: 111-118. 11. Gogol-Döring A et al. (2016) Genome-wide profiling reveals remarkable parallels between insertion site selection properties of the MLV retrovirus and the piggyBac transposon in primary human CD4+ T cells. Mol Ther 24(3): 592-606. 12. Osborn MJ et al. (2016) Evaluation of TCR gene editing achieved by TALENs, CRISPR/Cas9, and megaTAL nucleases. Mol Ther 24(3): 570-581. 13. Smith TT et al. (2017) In situ programming of leukaemia-specific T cells using synthetic DNA nanocarriers. Nat Nanotechnol 12(8): 813-20. 14. Stephan SB et al. (2015) Biopolymer implants enhance the efficacy of adoptive T-cell therapy. Nat Biotechnol 33(1): 97-101. 15. Roybal KT et al. (2016) Engineering T cells with customized therapeutic response programs using synthetic Notch receptors. Cell 167(2): 419-32.
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